Növényélettan tételek

Előnézet
Növényélettan tételek (2016) boritókép

A jegyzetről

Növényélettan II. tételek kidolgozva

Vásárlás (500 Ft)
Név
Növényélettan tételek
Típus
Felsőoktatás
Tantárgy
Növényélettan
Év
2016
Szak
Biológia
Intézmény
Szegedi Tudományegyetem
1 letöltés
Szerző
Létrehozva
2022-01-06
Oldalak száma
33
Jelentem

Növényélettan II.   Növekedés és fejlődésélettan tételek  Jelérzékelés és –továbbítás (szignál transzdukció) növényekben. Az eukarióta (ezen belül a  növényi) génexpresszió szabályozása. A növényi hormonreceptorok és csoportosításuk.  Másodlagos jelátvivő molekulák csoportosítása és szerepük a növények belső vagy környezeti  jelekre adott válaszreakcióiban.  A jel (szignál): ​környezeti tényezők (fény, vízpotenciál), belső faktorok (hormonok, egyéb jelmol.)  Jelérzékelés (szignál percepció): ​receptorok, membrán­kapcsolt események és receptorok, citoplazmikus  receptorok  Jelátvitel (szignál transzdukció): ​Erősítés (citoplazma): második hírvivők, protein kinázok, jelproteinek,  nukleáris transzport. Dekódolás „értelmezés”, (nukleusz) transzkripció  Válaszreakció: ​Transzláció, proteinszintézis, adaptáció  Az eukarióta (növényi) genom jellemzői: Az eukarióta DNS­ben nagy mennyiségű nem kódoló szekvencia van  (szerep:  kromoszóma  organizáció).  A  nem  kódoló  DNS  nagy  része   repetitív,  ismétlődő  szekvencia.  A  nem  kódoló  DNS másik  részét  távtartó  (spacer)  DNS­nek  nevezik, ez egy kópiájú. Az emberi genom 5%­a fehérjét  kódoló  gén.  A legtöbb  haploid  növényi  genom  20000  ­ 30000 gént  tartalmaz (az ​Arabidopsis​ban 20 000). Az  emberi genom mérete 3x109 ​ ​bp, az ​Arabidopsis​é ​ ​1,5x108 ​ ​bp/haploid genom.  Az eukarióta génexpresszió szabályozási szintjei​:  Genom szintjén:  ­ gén amplifikáció (ritka) ­  többszörösen előforduló  génről több mRNS képz.  ­ DNS szerkezeti  átrendeződés  ­ kromatin de­kondenzáció  (hisztonok, inaktív  heterokromatin erősen  kondenzált)  ­ DNS metiláció (erős  metiláltság ­ citozin  bázisoké, kis transzkripciós  aktivitás)  Transzkripció szintjén:  ­ DNS elérhetősége az  expresszióra   ­(RNS polimeráz II)  RNS processzálás (érés)  szintjén: ​5’ sapka, poli­A  farok, intronok kivágása, exonok összekapcsolása  Az mRNS transzportja a nukleuszból  Transzláció:​ az mRNS turnovere   Poszttranszlációs módosulás (Citoszol, ER): ​ER­be irányítás (konformáció kialakulása, alegységek  összekapcsolódása, másodlagos módosulás, az organellumokba való szállítás).  A hormonális és környezeti jeleket felfogó növényi receptorok csoportosítása:  Elhelyezkedhetnek a sejtfelszínen (G­proteinnel kapcsolt receptorok, enzimaktivitással rendelkező  receptorok, ioncsatornák), a citoplazmában (proteinkinázok, transzkripciós faktorok, fényreceptorok)  ABP1 (auxin binding protein) sejtfelszíni receptor ­ a sejtmegnyúlást serkentő auxinkötő protein, az ATP­áz  PM­be irányuló transzportját serkenti  F­boksz típusú (TIR1/AFB család) auxinkötő protein sejtmagi auxin receptor  A másodlagos messengerek csoportosítása és szerepe​:  1. 1  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   Ciklikus nukleotidok: cAMP ­ protein kináz A­t és ioncsatorna aktivitásokat szabályoz, vagy transukripciós  faktort foszforizál, cGMP ­ aleuron (vastagfalú, proteinszemcséket és szferoszómákat tartalmazó) sejtekben  gibberelin által indukált a­amiláz gén expresszálás és fitokrómok által szabályozott génexpresszió,  cADP­ribóz  Diacil­glicerin (DAG) ­ sejtosztódás szabályozása és differenciálása  Inozitol­trifoszfát ­ Ca­csatorna kapuzása  Nitrogén­monoxid ­ növekedés szabályozása; stressz akklimatizáció  Kalcium ion ­ kalmodulin­komplex közvetlenül a Ca2+ ​ ​­ATPázt, CaM­kinázokat aktivál    2. A növekedés és fejlődés fogalma. A növények egyedfejlődésének speciális vonásai. A merisztémák  típusai és működésük. Az apikális­bazális tengely kialakulása. A radiális mintázat kialakulása. A  gyökér szöveteinek differenciálódása. A hajtás differenciálódása.  Növekedés​: sejtek, szövetek, szervek, ill. növényegyed irreverzibilis méretváltozása, mennyiségi vált.  Fejlődés​:  a  növény  egyedfejlődése  során  meghatározott  sorrendben,  egymást  követően  és  egymástól  függően  mennek  végbe,  minőségi  változás.  Magasabbrendűeknél:  megtermékenyítés,  embrió­  és  magképzés, csírázás, vegetatív majd reproduktív fejlődési szakasz, az öregedés és a nyugalmi állapot.  Az ​egyedfejlődési​ program a virágos növényeknél  ­ a kettős megtermékenyítéssel kezdődik. Termésképzés, magképzés, nyugalmi állapot.  ­ Csírázás.  ­ Vegetatív növekedés.  ­ Virágképzés, virágzás, kettős megtermékenyítés.  ­ Termésképzés, magképzés.  ­ Öregedés.  ­ Az egyed halála.  A növényi merisztémák típusai  Primer merisztémák: hajtáscsúcs és gyökércsúcs merisztéma, embrionális szövetek  Másodlagos merisztémák:  ­ a posztembrionális fejlődés során alakulnak ki  ­ axilláris merisztémák (oldalrügyek), virágmerisztémák, interkaláris merisztémák, laterális merisztémák  (vaszkuláris kambium és parakambium, periciklus)  A hajtás apikális merisztémája repetitíven állítja elő a levélből, a nóduszból, a levél alatti internódiumból és  az ehhez tartozó rügyből álló fejlődési egységet, a fitomert.  A növények egyedfejlődésének egyéb jellegzetességei:  • A vegetatív merisztémák működése repetitív. A növényi test modulokból áll.  • Ezek újra és újra képződhetnek.  • A  növekedés  egyes  növényeknél  elméletileg  végtelen,  indeterminált  (a  hosszú  élettartamú  fák,  pl.  a   mammutfenyő,  több,  mint  4000  évesek  lehetnek).  Más  merisztémák  működése genetikailag  kódoltan  limitált (determinált működésű merisztémák).  • Az apikális  merisztémákból  származó sejtek osztódásának és megnyúlásának  mintázata meghatározza a  szerv alakját.  • Az egyed halála a fejlődés része.  A merisztémasejtek osztódása:  A vegetatív merisztémák folyamatosan regenerálják magukat.  A sejtosztódás képességét megtartó sejtet iniciálisnak vagy őssejtnek (stem cell) nevezzük.  Osztódás után a leánysejtek (daughter cell) egyike megtartja őssejt identitását.  A másik sejt elköteleződik és differenciálódó sejtté alakul.  Antiklinális osztódás: a szerv felszínére merőleges az új sejtfal.  Periklinális osztódás: a szerv felszínével párhuzamos az új sejtfal.  Formatív  osztódás:  egyenlőtlen  sejtosztódás,  az egyik  sejt  merisztématikus marad,  a  másik  elköteleződik. A  differenciálódás kezdete.  Proliferatív sejtosztódás: a leánysejtek azonosak, a szövetté differenciálódott sejtek számát gyarapítják.  Az apikális­bazális tengely kialakulása  2  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   Az embriózsákban lévő petesejt és a zigóta már polarizált. Az ​Arabidopsis​ embrió négy fejlődési stádiumon  megy keresztül: a globuláris állapot, szív stádium, torpedó stádium és érett embrió  Kétsejtes állapot: A kisebb, denz apikális sejtből lesz: hajtás apikális merisztéma, sziklevelek, hipokotil,  embrionális gyökér, gyökérmerisztéma   A  bazális  sejtből  lesz:  ­a  hipofízis,  később  ez  lesz  a  kollumella  és  a  nyugvó  centrum,  ­  a  szuszpenzor  (csírafüggesztő)  A radiális mintázat kialakulása  Sejtrétegek kívülről befelé:  Epidermisz  Kéreg (kortex)  Endodermisz   Periciklus központi henger  Floem, xilem   A  szövetek  radiális  mintázata  a  globuláris  stádiumban  kezd  kialakulni.  Az  ezt  kialakító  merisztémák:  Protoderma, Alapmerisztéma: kortex, endodermisz, Prokambium   A gyökér morfogenezise  A gyökér fejlődési zónái:  1. Gyökérsüveg  a  kollumellával:  védő  funkció,  gravitáció érzékelése  2. Merisztématikus zóna  3. Elongációs  zóna:  a  sejtosztódás  fokozatosan  0­ra  csökken, a sejtek megnyúlnak  4. Érett  vagy  maturációs  zóna:  a  differenciálódás  (floem előbb, xilem később) befejeződése.   A  gyökér  iniciálisok  (őssejtek)  működése  Arabidopsis​ban:  1. Nyugvó centrum (Quiescent center, 4 sejt) sejtjei ritkán osztódnak).  2. Kollumella őssejtek (Collumella stem cells): antiklinálisan és periklinálisan is osztódnak.  3. Kortex­endodermisz  őssejtek  (cortical­endodermal  stem cells): az endodermiszt és a kéreg sejtjeit hozzák  létre.  4. Gyökérsüveg­epidermisz őssejtek (Root­epidermal stem cells)  5. Sztéle iniciális (stele stem cells)  A hajtás morfogenezise és a levélállás (fillotaxis)  Az L1, L2 és L3 rétegekből jönnek létre a levél  primordiumok.   L1: epidermisz  L2: mezofillum   L3: edénynyalábok  Számuk és elrendezettségük a levelek szár körüli  elrendezésében tükröződik: fillotaxis   Az L​1 réteg eredetileg epidermiszt képz ő sejtjei periklinális  ​ osztódással hozzájárulnak a mezofillum kialakulásához is, ezekből a sejtekből zöld mezofillum sejtek  keletkeznek. Variegált levél.  A  genetikailag  meghatározott  pozícióban  kialakuló  levélprimordiumok  határozzák  meg  a  fillotaxist:  Váltakozó, Átellenes; Keresztben átellenes, Örvös, Spirális levélállás    3. Morfogenetikai jelenségek a növekedés­fejlődési folyamatokban. Polaritás, regeneráció,  korreláció. A növekedés mértéke, mérési lehetőségei, a növekedés sebessége és matematikai  elemzése. A növekedés kinematikai értelmezése.  A fejlődési program fontos alapelvei:  1. A sejtek, szövetek, szervek azonosságát transzkripciós faktorok expressziója határozza meg.  2. A sejt sorsát a pozíciója és nem a klonális eredete határozza meg.  3  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   3. A fejlődést gének együtthatásának hálózata kontrollálja.  4. A fejlődésben fontos szerepe van a sejt­sejt kommunikációnak.  A homeobox gének által kódolt homeodomén transzkripciós faktorok a fejlődési programot szabályozzák  A differenciáció során kialakul az adott sejtre jellemző génexpressziós profil, ami jellegzetes metabolikus,  strukturális és funkcionális karaktert alakít ki.  A differenciálódott növényi sejtek dedifferenciálódhatnak.  Az elhalt vagy sejtmagjukat vesztett növényi sejtek kivételével a növényi sejtek totipotensek. A totipotencia  teszi lehetővé, hogy protoplasztból vagy egyetlen sejtből új növényt regeneráltathatunk.  A differenciálódás lépései:  – Az induktív jel és percepciója (hormonok)  – A sejt azonosságát meghatározó gén expressziója.  – A differenciált génaktivitás.  – A gén produktumainak aktivitása.  Polaritás:​ növényi egyed, szerv v. sejt tengelyének végein különbségek jönnek létre  ­ Az indukált polaritás (​Fucus​ petesejt) Polaritás kialakulása: koncentrációgradiens  ­ A sejtmag szerepe (​Acetabularia,​)  ­ Magasabbrendűekben (a poláris auxin transzport)  A sejtosztódás síkjának meghatározódása  A: a pólusmezőkön különböző anyagok koncentrálódnak  B: polárisan irányított struktúra  C: anyag­gradiens polaritás  Az ​indukált polaritás​ (​Fucus​ petesejt)  Egyirányú megvilágítás indukálja. Ca2+ ​ ​ csatornák  egyenlőtlen eloszlása a két póluson. Ca2+ ​ ​ áram.  Aktin mikrofilamentumok koncentrálódása az  alsó póluson. Egyenlőtlen sejtosztódás: ez  stabilizálja a struktúra polarizáltságát.  A ​sejtmag szerepe​: ​Acetabularia  a) A zigóta rizoidot, szárat és kalapot fejleszt  b) A kimetszett szár­szegmens a beültetett sejtmag mellett regenerálja a rizoidot   c) A sejt sejtmag nélkül is regenerálhat kalapot  d) Ha   a  sejtmagot  egy  másik  faj  sejtmagjával  cseréljük  fel,  a  kalap  morfológiai  tulajdonságai az implantált sejtmag fajára lesz jellemző  A poláros auxintranszport eredménye: gyökeresedés a fiziológiai bazális végen  Regeneráció​: ­ ​Restitúció:​ kiegészülés, az embrionális szövet újrarendeződik  ­ Reparáció:​ hiányzó szövet vagy szerv pótlódása a járulékos régióból   ­ ​Reproduktív regeneráció (vegetatív reprodukció​): a vegetatív test egy részéből teljes növény  regenerálódik  Korreláció​:a növényegyedhez tartozó részek meghatározott formáinak vagy részelemeinek egymáshoz való  viszonya, mely szerint az egyikben történő változás a másikra is hat. létrehozhatja pl. a tápanyagellátottság,  a hormonok (apikális dominancia)  A növekedés mértéke és sebessége  Abszolút növekedés: össznövekedés (L) valamely időtartam alatt L = Lt​ ​ – L0​    ​L​t – L Relatív növekedés: a kiinduló méretre vonatkoztatott növekedés nagysága L​rel = ( ​0)/L ​0   ​ ​ ​ L ​  – L )/ Relatív növekedési sebesség: L​rel = ( ​ ​ Δ t x L ​   ​ t​ 0​ 0 4  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.     A növekedés kinematikai értelmezése  A  hipokotil  kampót,  mint  időben  állandó  struktúrát,  folytonosan  változó   helyzetű  elemek   építik  fel.  A   szövet­elemek  görbülnek,   majd  kiegyenesednek,  miközben távolodnak az apextől.  Pályagörbe:      sebességprofil relatív elemi  növekedési sebesség  Egy valóságos elem pozíciójának  változása az idő függvényében        4. Az  auxinok  fogalma,  szintetikus  auxinok,  antiauxinok.  A   szerkezet  és  a  hatás  összefüggése.  Az  auxinok  kimutatása.  A  poláris  auxintranszport  mechanizmusa.  A növényi hormonfogalom: A növényi hormon olyan sejtek közötti kommunikációt közvetítő jelmolekula,  amely vagy képződésének helyén vagy távolabbi szövetekbe transzportálódva már kis koncentrációban  (10­12 ​ ​­10­4  ​ ​M) is jelentős és széleskörű hatást gyakorol a növények növekedésére és fejlődési folyamataira.  Az auxinok serkentik a megnyúlásos növekedést.  Az IES homeosztázisát egy adott szövetben  • a bioszintézis   • a konjugátumok képződésének mértéke, (konjugátum: hormonok kis molekulasúlyú vegyületekkel  (pl. glükóz, cukoralkoholok, aminosavak) kovalensen tudnak kötődni, amivel inaktiválódnak)  • a kompartmentáció, (a kompartment pH­ja jelzi a hormonokat, mert gyenge savak)  • a lebontás sebessége  • valamint a transzportfolyamatok határozzák meg.  A legfontosabb ​természetes auxinok​: az indol­3­ecetsav (IES), a 4­klórindol­3­ecetsav és az indolvajsav   5  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   Szintetikus auxinok​: 2,4­diklórfenoxi­ecetsav (2,4­D), 2­metoxi­3,6­diklórbenzoesav (dicamba),  indol­3­propionsav, 2­nafroxiecetsav, 1­nafriecetsav, 2,4,5­klórfenoxiecetsav, 2­metil­4­klórfenoxiecetsav,  2,3,6­triklórbenzoesav, 2,3,5,6­Cl­benzoesav, 4­amino­3,5,6­triklórpikolinsav, N,N­dimetiletio­karbamát  A  szintetikus  auxinok  gyakorlati  jelentősége:  „Széleslevelű”  gyomok  (növények)  kiirtására  szolgál  fűfélék  közül.  Nagyobb  mértékű  a  hatóanyag  felvétele,  rosszul  metabolizálódik.  Az  etilénprodukció  fokozódása  gyors lankadást okoz.  Az  auxinok  kétpontos  kötődésének  elmélete:  az  auxinokban  0,5  nm  távolságra  egy  parciális  +  és  egy – töltés helyezkedik el    Az  auxinok  a  receptor  fehérjéhez  két  ponton,  elektrosztatikus úton kötődnek.    Antiauxinok​:  transz­fahéjsav,  γ­fenilvajsav,   2,6­diklór­fenoxiecetsav,  2,4­diklóranizol,  2,3,5­trijód­benzoesav,  maleinsav­hidrazid,  p­klórfenoxi­izovajsav    A  szövetek  ​auxin  akkumulációjának  kimutatása  auxin érzékeny ​DR5 ​promóterhez kapcsolt ​GUS ​ripotergén aktivitásával  A  vizsgálandó  promótert  olyan  génnel  kapcsolják  össze,  amely  a  növény  elpusztulása  nélkül, ​in  vivo  mutat  jól  detektálható aktivitást,  majd a konstrukciót  vektor segítségével a transzformálandó szövetekbe juttatják.  A  β­glükuronidáz  (GUS)   szubsztrátjának,  a  4­metilumbelliferil­glukuronidnak  a  hozzáadása  után  kék  reakciótermék mutatja a promóteraktivitást.  A  luciferáz  nevű  riportergén  által  katalizált  reakció  során  a  szubsztrát  jelenlétében  kibocsájtott  fény  luminométerrel vagy más képanalizáló berendezéssel mérhető.  (Luciferáz  +  luciferin  +  ATP  Mg2+ ​   →→luciferáz  +  reakciótermék  (oxiluciferin)  +  AMP  + fény.  A  lumineszcens  fény  kibocsájtása  után  az  oxiluciferin  luciferinné  alakul  vissza.  Biológiai  tesztekkel  (zab  koleoptil  görbüléses  teszt,  zab  koleoptil  megnyúlásos  teszt,  kimutathatósági  határ:  2  x  10­5​ ​ g / minta)  Rádioimmunológiai módszer (10­9​ ​ g / minta)  Tömegspektrometria (10­12 ​ ​g ​ ​/ minta)    Kimutatási módszer: leadó­felvevő agarkocka módszer  A donor kockában lévő radioaktív IES csak akkor jelenik  meg a fogadó kockában, ha a szegment fiziológiai apikális  végére helyeztük.  Az IES az auxin forrásból, a hatáscsúcsból, a hajtásban és a gyökérben bazipetálisan, ​polárisan  transzportálódik  1. A transzport sejtről sejtre történik.  2. A koleoptilban a kéregsejtekben is, a szárban a xilémparenchima sejtekben.  6  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.       Az IES bazipetális aktív transzportjában az aktin filamentumok is szerepet játszanak  Az auxin bazipetális transzportja az auxin efflux hordozó (PIN1) bazális pozíciójától függ. A citokalazin D  hatására az aktin filamentumok fragmentálódnak, a transzport elveszti polaritását. A folyamatot reverzibilis  protein foszforiláció szabályozza.    7  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   Az  IES  metabolizmusa  (bioszintézis,  lebontás,  konjugátumképzés),  és  hatásai  a  növények  egyedfejlődési folyamataiban  (sejtosztódás,  szállítószövetek  differenciálódása, járulékos gyökerek  képződése, apikális dominancia, virágok nemének meghatározása, parthenokarpia).   Az indolecetsav bioszintézise triptofánból: az indol­3­piroszőlősav, a triptamin és az indol­3­acetonitril út  5.   Konjugátumok​: ​IES peptidek​: indolacetilaszparát, indolacetilglutamát, ​glükozil­észretek​:  indolacetil­ß­L­arabinóz, indolacetil­ß­D­glükóz, indolacetil­O­mioinozit,  indolacetil­1­2­O­mioinozitol­arabinozid (galaktozid), ​tioészter​: glükobrasszicin.  Az IES oxidatív lebomlása  1. Az IES peroxidázok által katalizált, dekarboxilációval történő lebomlása, amely oxindolokat és  dekarboxilált indolokat eredményez.  2. A dekarboxiláció nélküli út történhet aszparaginsavval alkotott konjugátumon keresztül vagy közvetlenül.  Az indolecetsav fiziológiai hatásai:  1. A megnyúlásos növekedés szabályozása  Optimum görbe szerint hat. A szervek eltérő auxinérzékenységgel rendelkeznek.  Az auxin­indukálta növekedésnek van egy gyors és egy lassú szakasza  A sejtfal pH változásának és a megnyúlás megkezdődésének kinetikája az IES  kezelés után  A sejttérfogat növekedése vízfelvétellel történik.  A sejt vízpotenciál csökkenésének oka:  Növekedési sebesség (GR)= irreverzibilis  Ψ​w=  ​ Ψ​P+ ​ Ψ​π   GR = m(ψ​P­Y) ​ extenzibilitás (m) (turgornyomás – küszöbturgor)  Az  IES  az  irreverzibilis  extenzibilitásra  (sejtfal  plaszticitására)  hat.  Ez  a  sejtfallazulás.   Az IES­indukált savas növekedés  8  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   A kétszikűek sejtfala:​ 1. cellulóz mikrofibrillum; 2. xiloglukán;  3. matrix gél; 4. ramnogalakturonán   A sejtfal komponensek keresztkötéseit megszüntető enzimek:  poligalakturonáz, xiloglukán endo­transzglükoziláz (XET ­  xiloglukánt hasít), pektinmetilészteráz   Sejtfal struktúrája: cellulúz mikrofibrillumok (H­kötés), lignin,  struktúr fehérjék (Izo­ditirozin keresztkötés a sejtfalfehérjék  tirozinjai között), mátrix poliszacharidok   ­ Pektin: homogalakturonán (a pektin –COOH csoportja  metilésztert képezhet vagy Ca2+ ​ ​ hidakat hoz  létre a szomszédos polimerrel)   ramnogalakturonán, arabinán, galaktán   ­ Hemicellulóz: xiloglukán (H­híd közte és a cellulóz között)  xilán, glukomannán, arabinoxilán, β­D­glukán (fűfélék)  Fenolcsoportok közötti keresztkötés  A sejtfal rigiditását fokozzák: a kovalens keresztkötések; diferulát híd; izoditirozin hidrogénkötések;  Ca2+ ​ ​­hidak   Az  egyik  fontos  sejtfal  lazító  faktor  az  expanzin  fehérje,  amely  IES  hatására  expresszálódik,  és  a  hidrogén­kötéseket szünteti meg.  Az  IES  az  apoplaszt  savanyodását  a  H+​ ​­ATP­áz  serkentésén  és   ​de  novo  szintézisének  indukcióján,  az  endomembrán transzport serkentésén és a fehérje aktiválásán keresztül fejti ki.  2. A gyökér gravitrópos reakciója  A gravitációs erő egyenlőtlen auxineloszlást okoz a gyökérben, az alsó oldalon több IES. A gyökérben ez gátló  koncentráció. A jobban növekvő oldalon a sejtfal pH­ja savasabb. A megnövekedett IES koncentrációt jelzi az  IES­indukálta gének expresszója. Small auxin upregulated RNA­s (SAURs)  A gravitációs erő érzékelése: sztatolit elmélet  Sztatociták a gyökérsüvegben, amiloplasztok, sztatolitok a sztatocitákban. A sztatolitok vízszintes helyzetű  gyökérben elmozdulnak, és mechanikai hatást gyakorolnak a bazális helyzetű ER membránrendszerére. Ez  Ca2+ ​ ​ felszabaduláshoz vezet az ER lumenéből. Ez megváltoztatja az IES­sel szembeni membránpermeabilitást  és a hormoneloszlást.  3. Az auxinok szabályozzák a sejtosztódást  Növeli a CDKA;1 ciklin­dependens protein kináz és egy mitotikus ciklin mRNS szintjét a gyökerekben. Ez  önmagában nem, csak citokininek jelenlétében elég a teljes sejtciklushoz.   4. Az apikális dominancia  1. A csúcsrügy dekapitálásakor az oldalrügyben lévő auxinok mennyiségének csökkennie kellene.  Auxin­érzékeny promóterhez kapcsolt luciferáz géneket expresszáló transzgénikus növényekben (​LUXA,  LUXB​) a csúcs dekapitálásakor megnőtt a promóter aktivitása.  2. Más tényezők is közrejátszanak: tápanyaghiány; citokininek; az oldalrügyben lévő inhibitor  5. az auxinok indukálják a xilém elemek differenciálódását és a sérült elemek regenerációját.  Kapcsolat az IES koncentrációval: magasabb IES koncentráció a trachea elemek képződésének kedvez,  viszont sok, kis méretű sejt keletkezik  6. járulékos gyökerek iniciálása  A szár bazális részén lévő vékonyfalú, parenchimatikus sejtek   ­ dedifferenciálódnak,   ­ egyenlőtlen sejtosztódással osztódnak,   ­ és létrehozzák a gyökér apikális merisztémáját   9  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   7. a levélleválás gátlása  Magas auxin szint a levéllemezben, alacsony a szárban  A levélleválást az etilén az auxinnal együtt szabályozza  1. fázis: a fenntartási fázis  2. indukciós fázis,  3. leválási fázis   sok auxin, csökkenő auxinszint,   kis etilén­érzékenység etilénprodukció nő  A terméskötés, a termés növekedés és a termés lehullásának szabályozása  8. az IES parthenokarpiát idéz elő  A partenokarpia típusai:  •  vegetatív partenokarpia: megporzás nélküli termésfejlődés (ananász, banán)  • stimulatív partenokarpia: pollináció van, megtermékenyülés nincs (orchideák, szőlő)  • embrióabortusz, álpartenokarpia (cseresznye)  • átmeneti partenokarpia (​Ginkgo biloba​, a megporzás után a pollentömlő növekedése a termés  lehullásáig gátolt  9. szövettenyészetekben a morfogenezis szabályozása  Magas auxin/citokinin arány: gyökérképződés  Átmeneti auxin/citokinin arány: kallusz  Alacsony auxin/citokinin arány: hajtásregeneráció    6. A  sejtmegnyúlás  hormonális  szabályozása  (az  auxinok,  gibberellinek,  citokininek,  az  abszcizinsav  és az etilén hatása a sejtmegnyúlásra).  Auxin​: Az egyik fontos sejtfal lazító faktor az expanzin fehérje, amely IES hatására expresszálódik, és a  hidrogén­kötéseket szünteti meg. Az IES az apoplaszt savanyodását a H+​ ​­ATP­áz serkentésén és ​de novo  szintézisének indukcióján, az endomembrán transzport serkentésén és a fehérje aktiválásán keresztül fejti  ki.  Gibberelin​: Rozettás és a törpe növények internódiumai növekedésének serkentése  A GS​1 helyettesíti a hosszú nappalt a rozettás növények internódiumának megnyúlásában.  ​ Az árasztott rizs (deepwater rice) növekedése az vízborítottság kialakulása után:  →etilénszintézis indukciója  1. A vízborítottság csökkenti az O​2 parciális nyomását a szövetekben  ​ 2. Az etilén az endogén GS​1­gyel szemben érzékenyebbé teszi a szöveteket  ​ 3. A GS​1 sejtmegnyúlást indukál az interkaláris merisztémában   ​ 4. Az endogén GS​1 serkenti a sejtciklust is.  ​ EREDMÉNY: 25 cm/nap növekedési sebesség  ő magvak számának csökkenése: a gibberellinek  őn belül követi a G​2 fázisban lév 1.A GS​1 kezelést rövid id ​ ​ serkentik a G​2 – M átmenetet.  ​ 2. A GS fokozta egy ciklin dependens proteinkináz (​CDC2​) és két mitotikus ciklin gén expresszióját.  3. A GS serkentette a CDC2­t aktiváló kináz expresszióját is (CAK).  1. A gibberellin nem okoz turgornövekedést és előzetes ozmotikus adaptációt.  2.A GS csökkenti a megnyúláshoz szükséges küszöbturgort.  3. A GS növeli a sejtfal extenzibilitását: a növekedést limitáló keresztkötések elvágásával  XILOGLÜKÁN­ENDO­TRANSZGLÜKOZILÁZ  Ez lehetővé teszi az expanzinok gyorsabb diffúzióját a sejtfalban  Citokinin​:  megváltoztatják  a  sejtfal  plaszticitását,  de  az   elaszticitásra  nincsenek  hatással.  Proton  extrúziót  nem  indukál,  tehát  nem   okoz  savanyodást  a  sejtfalban.  A  sziklevelek  növekedését  serkentik,  de  nem  sejtszám növekedéssel.  Abszcizinsav​:  gátolja  a  megnyúlásos  növekedést,  mert  blokkolja  a  H+​   szekréciót,  ezáltal  a  sejtfal  svanyodását.  Etilén​: Gátolja a hajtás megnyúlásos növekedését, serkenti a laterális expanziót, akadályozza a hipokotil és  epikotil kampó kiegyenesedését. Epinasztiát idéz elő (a levél felső sejtsora jobban nyúlik, a levél úgy néz ki,  mintha lekonyulna). Fokozza a hajtás gibberellin­érzékenységét, így fokozódik a hajtás megnyúlása árasztott  növényekben  10  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   1. Az etilén hatása a növény hajtásnövekedésére  1­es típusú célsejt, szártagok:​ az IES longitudinális, az etilén oldalirányú kiterjedést okoz (a szár megnyúlásra  képes sejtjei).  Az etilén a hipokotil oldalirányú térfogat­növekedését a mikrotubulusok (ezt követően a cellulóz  mikrofibrillumok) transzverzálisból longitudinális irányba történő átrendezésével éri el.  2­es típusú célsejt:​  az abszcissziós zónában  Csak az etilén okoz megnyúlást, IES nem (a leválási zóna sejtjei).  A levélleválás folyamatában az etilén a kulcsregulátor, az auxin pedig a szupresszoraként hat  1. fázis: a fenntartási fázis, a sok auxin csökkenti az etilén­érzékenységet (hidrolitikus enzimek  szupressziója)  2. indukciós fázis, a csökkenő auxin szint miatt növekvő etilén­produkció és etilén­érzékenység a leválási  zónában. Az etilén csökkenti az auxin szintézisét és transzportját, növeli lebontását.  3. leválási fázis, etilénprodukció nő, erre a sejtfal poliszacharidokat és fehérjéket bontó hidrolázok  indukciója következik be  Az etilén a leválási zóna sejtjeiben megnyúlást és enzimindukciót vált ki: A sejtfal­hidrolizáló enzimek  hatására létrejövő protoplasztok gömb alakja és térfogat­növekedése következtében a xilém tracheái  szétfeszülnek, a levél elválik a szártól.  Az etilén serkenti a levéllemez természetes vagy stressz­indukált öregedési folyamatait   (a citokininek gátolják az öregedést).  Az etilén szeneszcencia indukciójának egyik oka, hogy a levelekben lecsökken a kataláz (CAT3) és az  aszkorbát peroxidáz (APX) aktivitás. A szuperoxid dizmutáz (SOD) és a glutation reduktáz (GR) aktivitás  viszonylag hosszú ideig változatlan marad. Az ABA is kiváltja a levél öregedését, de nem az etilénnel  kapcsolódva.  Az etilén serkenti a virág sziromleveleinek öregedését:   3­mas típusú célsejt​: az IES és az etilén is longitudinális megnyúlást okoz (levélnyél epinasztiája, mocsári  növények levélnyele)  ő.  Árasztás ​hatására a gyökerek körül az O​2 tartalom csökken, ACC oxidáz aktivitás csökken, ACC szint n ​ Xilémben a levélbe jut, ahol az ACC oxidáz etilént alakít belőle, mely epinasztiát okoz.  Az elárasztott rizs interkaláris merisztémájának és a megnyúlási zóna sejtjeinek ​gibberellin (GS1​ ​)  érzékenységét ​a csapdázódott etilén fokozza, mely sejtmegnyúlást indukál. Eredmény: rendkívül gyors  megnyúlás.  Az árasztás hatására a gyökerekben csapdázódott etilén a kérgi részben aerenchima képződést indukál. Az  etilén az árasztott gyökérszövetben a celluláz expresszióját indukálja, a sejtfalak feloldódása a programozott  sejthalál része.    7. Az auxinok szerepe a tropizmusokban. Az auxinok receptorai, jelátvitele.  Az auxinok fiziológiai hatásai: A tropizmusok  a./ Fototropizmus   A fény egyenlőtlen auxineloszlást okoz: sötét oldalon több IES. Nincs növekedés a csúcs összes  auxintartalmában.  Az alacsony fényintenzitáson működő fototrópos fotoreceptor: PHOT1 (fototropin1)  • Kék fény aktiválja, kék fény hatására a fehérjerész foszforilálódik  • Kromofór csoport: flavin­mononukleotid (FMN)  • Kis mólsúlyú, PM­kötött  • A ​NONPHOTOTROPIC​ ​HYPOCOTYL 1​ (NPH1) lokusz nullmutációja → az NPH 1 fehérje az apoprotein   • Autofoszforilálódó Ser/Thre protein kináz   A fototropizmus fényintenzitás függése  • 1. pozitív görbület​: csúcsi régió, a reciprocitás törvénye érvényes, a PHOT1 oldalirányú foszforilációs  grádiense a maximumig  • Neutrális zóna​: a másik oldal is maximálisan foszforilálódik (a nagyobb fényintezitás miatt)  • 2. pozitív görbület​: a bázis foszforilálódik a megvilágított oldalon  PHOT2: a nagy fényintenzitást érzékelő fototrópos fotoreceptor  11  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   • A ​phot1​ nullmutánsok nagy fényintezitáson pozitív fototróposak   • A PHOT2 is fényfüggő autofoszforilációra képes Ser/Thre kináz   • A ​phot2​ mutánsok megtartják a fototrópos választ  • A ​phot1 phot2​ kettős mutánsok nem mutatnak fototropizmust   • Hasonló szerkezet  A PHOT1 és PHOT2 receptor szerkezete  A. A PHOT1 protein kék fény­függő autofoszforilációja  (autoradiogramm) D: dark, BL: kék fény, WT: vad típus,  phot1­5: mutáns  Csak a membrán frakcióban történik autofoszforiláció kék  hatására, a fehérje PM­kötött.  B. B) Az N terminális régióban két LOV­domén van  (regulated by light, oxygen, voltage), az FMN­t kötik.  C. C) Két kromofór van  b./ A gravitropizmus  • Pozitív vagy negatív ortotrópos   • Plagiotrópos (az inger irányával szöget zár be), diatrópos  inger irányára merőleges) növekedés  • Prezentációs idő: az a minimális idő, amíg az ingernek hatnia kell  • Látens idő: a prezentációs idő után  mért időtartam, amíg az elhajlás megjelenik  • Küszöbinger  • Percepció és indukció  fény  (az  Az auxin receptorai:   1. sejtfelszíni receptor, ABP1, a sejtmegnyúlást serkentő auxinkötő protein  • ABP1 protein (​au ​ xin ​b​inding ​pr​ otein)  • ER lokalizációs jel (KDEL)  • Dimer,  kukoricában  5  ABP1  gén  • a  fehérje  nagy  része  az  ER­hez kötött  • 2%­a PM­lokalizált   • nem  vesz  részt  minden  auxinválaszban   • az  ATP­áz   PM­be  irányuló  transzportját serkenti   Az ABP1 auxinreceptor működése  és a  jelátvitel elemei  ­ A sejtciklus aktiválása: MAP kinázokon keresztül  ­ Ca2+ ​ ​ csatorna aktivitással a citoszolikus, szabad [Ca2+ ​ ​] megemelése  ­ A heterotrimer G­protein közvetítésével a foszfolipáz A​2 aktiválása, a lizofoszfatidilkolin proteinkinázokat  ​ aktivál  ­ A citoszolikus pH csökkentése 0,2­es pH egységgel (ATP­áz aktiválás)  2.: sejtmagban lokalizálódó receptor  F­box típusú (TIR1/AFB család) auxinkötő protein  Az ubiquitin E3 ligáz komplex (SCF, több alegységből áll) sejtmagi auxin receptorként funkcionál.  Az auxin a TIR1­hez köt.  ATP­függő ubiquitináció után az AUX/IAA represszor lebomlik. Az auxin­indukálta géneket az AUX/IAA  fehérjék represszálják. Az auxin­indukált gének promóterében az auxin válaszelemekhez (AuxRE, TGTCTC)  kötődő auxinválasz faktorok (ARF) a represszor lebomlása után serkentik a transzkripciót.  Az IES által indukált génexpresszió jellemzői:  • Primér válaszgének​: nem kell fehérjeszintézis  12  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   Csoportjaik: ​Aux/IAA​ gének,​ SAUR​ (​sm ​ all ​au ​ xin ​u​p​re ​ gulated) gének, ​GH3​ géncsalád, ​GST​­szerű  gének, ​ACC​ ​szintáz​ gének  • Szekunder válaszgének: a​  transzkripciós faktoraik IES jelenlétében szintetizálódnak, cikloheximid  gátol  • AuxRe ​ (auxin response elements) ​válaszelemek ​ a promóterben     A gibberellinek fiziológiai hatásai. A gibberellinek által indukált jelátviteli folyamatok jellemzése és  8. ismertetése az ​α​­amiláz gén expressziójának bemutatásával.  „Foolish seedlings”: A rizs „bakanae”, bolond csíranövény nevű betegségét Kurosawa írta le: a növények  hosszú, gyönge szártagokkal rendelkeznek és sárgulnak  A betegséget a ​Gibberella fujikuroi​ nevű gomba toxinja okozta, amelyet gibberellinnek neveztek el.  C­20­as, C­19­es gibberellinek  A legfontosabb fiziológiailag aktív gibberellinek: gibberellin A1​ ​, gibberelinsav, gibberellin A4​   Fiziológiai hatásai:  1. A megnyúlásos növekedés serkentése  Rozettás és a törpe növények internódiumai növekedésének serkentése  A GS​1 helyettesíti a hosszú nappalt a rozettás növények internódiumának megnyúlásában, és nem induktív  ​ feltételek mellett indukálja a virágzást.  Az árasztott rizs (deepwater rice) növekedése az vízborítottság kialakulása után:  1. A vízborítottság csökkenti az O​2 parciális nyomását a szövetekben  →etilénszintézis indukciója  ​ 2. Az etilén az endogén GS1​ ​­gyel szemben érzékenyebbé teszi a szöveteket  3. A GS​1 sejtmegnyúlást indukál az interkaláris merisztémában   ​ 4. Az endogén GS​1 serkenti a sejtciklust is.  ​ EREDMÉNY: 25 cm/nap növekedési sebesség  ő magvak számának csökkenése: a gibberellinek  őn belül követi a G​2 fázisban lév 1.A GS​1 kezelést rövid id ​ ​ serkentik a G​2 – M átmenetet.  ​ 2. A GS fokozta egy ciklin dependens proteinkináz (​CDC2​) és két mitotikus ciklin gén expresszióját.  3. A GS serkentette a CDC2­t aktiváló kináz expresszióját is (CAK).  1. A gibberellin nem okoz turgornövekedést és előzetes ozmotikus adaptációt.  2.A GS csökkenti a megnyúláshoz szükséges küszöbturgort.  3. A GS növeli a sejtfal extenzibilitását: a növekedést limitáló keresztkötések elvágásával  XILOGLÜKÁN­ENDO­TRANSZGLÜKOZILÁZ  Ez lehetővé teszi az expanzinok gyorsabb diffúzióját a sejtfalban  2. A gibberellin serkenti a magvak és rügyek nyugalmi állapotának megszakítását  Fontos a nyugalmi állapotot fenntartó abszcizinsav és a gibberellinek aránya.  3. A gibberellinek az auxinokkal együtt szabályozzák az apikális dominanciát  A csúcsrügyben szintetizálódó auxin gátolja az oldalrügyek kihajtását.  A csúcs eltávolítása vagy a citokininek megfordítják a hatást.  A gibberellinek erősítik az auxinok apikális dominanciát eredményező hatását.  Az indolecetsav hatására a gibberellinsav1​ ​ fokozottan szintetizálódik  4. A gibberellinek szabályozzák a virágzást  •  juvenilis fázisból reproduktívba való átmenetet indukálnak nyitvatermőkben  •  adult fázist juvenilissé fordítják borostyánban  • gyorsítják a virágrügyek képződését és növelik azok számát  • magas gibberellin/auxin arány a hím virágok képződésének kedvez  5. A gibberellinek szabályozzák a termés képződését és fejlődési folyamatait  •  ​egyes fajokban (körte, citromfélék) fokozzák a terméskötést)  •  lokálisan növelik a termés méretét  •  partenokarpiát idéznek elő   •  egyes termésekben gátolják a termésérést   6. A GS3​ ​ partenokarp termések kialakulását indukálja  7. A GS serkenti a magvak csírázását  13  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   A gibberellinek hatása a csírázásra, és az α­amiláz indukciójának molekuláris mechanizmusa     A GS​3 az  α­amiláz indukciót a transzkripció szintjén aktiválja:  ​ A  gélretardációs  kísérletben  a  gibberellinnel  kezelt  aleuronsejtekből  származó  fehérje  kötődése   a  promóterhez lassította a DNS mozgását a gélben   A GS3​ ​ hatására indukálódó   •  primér válaszgének terméke a GAMYB transzkripciós  faktor  •  ez aktiválja az α­amiláz gén promóterének GARE  elemeihez (gibberellin válasz elem) kötődve a  transzkripciót  Az α­amiláz szintézise az durva felszínű ER­en történik, a  lumenben a BiP közvetítésével Ca2+ ​ ​­ot köt, majd  szekretálódik az apolasztba. Az α­amiláz egy  endohidroláz, ami megkezdi a keményítő kristályok  emésztését, az amilóz és az amilopektin hidrolízését a keményítőszemeken belül.    9. A  gibberellinek  bioszintézise,   a  szerkezet  és  aktivitás  viszonya.  Az  gibberellin­szint  szabályozásának endogén és környezeti tényezői.  Bioszintézis:  1. Az első  lépés a ciklizáció:   ­ a proplasztiszban lokalizálódik  ­ az A és a B gyűrű záródását a kopalil­difoszfát    szintáz (CPS), a C és D gyűrűét a kaurén szintáz (KS)  katalizálja     KO: kaurén oxidáz   ­ gátolják a kvaterner ammónium és foszfónium tartalmú retardánsok (AMO 1618)  2. A GS​12­aldehid keletkezése oxidációs reakciókban  ​ ­ az endoplazmatikus retikulumban   ­ Cyt P450­függő monooxigenázok katalizálják  ­ gátlószer: triazol típusú retardánsok (Paklobutrazol,    Unikonazol)  ­ KO: kaurén oxidáz; KAO: kaurénsav oxidáz   3. A GA12 ​  oxidációja gibberellinsavvá   ​ ­ korai C­13­as oxidáció  14  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   ­ dioxigenázok katalizálják  ­ citoszolban történik  ­ gátlószerek: ciklohexántrion típusú retardánsok   Korai 13­as hidroxiláció, majd ezt követően a 20­as C atom oxidációja: GS20 oxidáz  A GS bioszintézis kulcsenzimei, a GS 3β­hidroxiláz és a GS 20­oxidáz a  végtermék GS​1 feedback gátlása alatt állnak  ​ Az endogén gibberellinszint szabályozásának lehetőségei  1. A gibberellinek bioszintézise  Egyes lépéseit a törpe kukorica mutánsokban fedezték fel.  2. ​A gibberellinek bioszintézisét két környezeti tényező szabályozza  (fény, hőmérséklet)  • a nappalok hosszúsága, hosszúnappalon a GS​1 prekurzorának,  a  ​ GS20 ​ ​­nak mennyisége nő  • a fitokróm, amely a 3​β­​ hidroxiláz enzim expresszióját fokozza  saláta magban   • a vernalizáció, amely megnöveli a virágzásindukcióban aktív  GS​9  mennyiségét a hajtáscsúcsban  3. ​A gibberellinek inaktiválódása  • 2­es pozícióban hidroxilálódás   • 2­es pozícióban glükóz konjugátum kialakulása  • a  7­es  karbonsav  glükozil­észter  származéka  hidrolizálódik,  raktározott forma    10. A citokininek fiziológiai és morfogenetikai hatásai, szerepük a sejtosztódás szabályozásában.  Citokinin​: purinvázas, sejtosztódást indukál, kallusztenyészet növekedését fenntartja (auxinnal együtt)   Fejlődésélettani hatások  • Sejtosztódás, differenciálódás szabályozása  • Organogenezis szabályozása  • Sejtmegnyúlás serkentése (sziklevelek)  • Serkentik a kloroplasztiszok érését (intracelluláris morfogenezis)  • Jelzik a növény N­ellátottságát  • Szabályozzák az öregedést  • Tápanyageloszlásban a ​sink​ erősségét növelik  (​sink­source​ viszonyok)  A sejtosztódás szabályozása  Hosszú interfázis, rövid mitótikus fázis  ­ G1 és G2­fázisokban a sejttömeg növekszik  ­ DNS replikáció az S fázisban, citokinézis az M fázisban  Zeatin szintbeli csúcsok S fázis végén, G2/M  átmenetnél és késő G1 fázisban  Mesterségesen adagolt citokinin sejtosztódást indukál  2 fontos regulációs pont:  1. kritikus restrikciós pont a G1 fázis vége: itt dől el a  sejt sorsa az újabb osztódási ciklus vagy a  differenciálódás felé  2. pont a G2/M határa  A fázisok közti átmenetet ciklin­dependens  protein­kinázok (CDK) és más enzimek szabályozzák.  Azt, hogy melyik válik aktívvá, a regulációs alegységeik,  a ciklinek megjelenése dönti el (G1 végén a D ciklinek,  ezek közül különösen fontos a CycD3).  15  A dokumentum bármely részének, bármilyen módszerrel, technikával történő másolása és terjesztése tilos! © www.whyz.   A CDK aktivitás regulációja:  ­ ciklin szintézis és lebontás (proteaszómával a citoszolba)  ­  CDK­foszforiláció/defoszforiláció  (2, treonin és  tirozin­foszforilációs  hely,  foszforilálódva az egyik  aktiváló,  másik gátló hatású)    Vegetatív szervek organogenezise​: A citokininek gátolják a gyökérsejtek osztódását (kék=DAPI­val festett  sejtmagok). ​ ​A citokininek serkentik a hajtás növekedését és a levelek kifejlődését. ​ ​A citokininek gátolják a  gyökérnövekedést, a járulékos gyökérképzést.  A természetes citokinin szintek a gyökérben gátló hatásúak.  (Kloroplasztiszok érése  Etioplasztiszok   Az etiolált növények „kloroplasztisza”.  A proplasztiszból való kloroplasztisz átalakulás során fény hiányában keletkezik.  Nincs színes klorofill molekulája, de erős benne a protoklorofillid szintézis.  A membránlipidek prolamelláris testekké szerveződnek, ami szemi­kristályos hálózatos fázis (75 %­a  lipid).  A citokininek a fény hatására beindított kloroplasztisz érést serkentik.  Egyéb fejlődésélettani hatások  A nitrogén ellátottság hatása  A gyökér jó N­ellátása hatására:  ­ nő a gyökérbeli citokinin akkumuláció  ­ megváltozik a gyökérzet morfológiája  ­ nő a hajtásba szállított citokinin mennyisége  Gyökér­hajtás kommunikáció, információ a N­ellátottságról  Az öregedés (szeneszcencia) szabályozása  •  Öregedés = lebontási folyamatok irrverzibilissé válnak  •  Különbség a szervek és a növényegyed öregedése között  •  tápanyagelszívó merisz